以下是常见采血管的详细对比及注意事项： 管帽颜色 | 添加剂 | 用途 | 注意事项 | 红色 | 无添加剂 | 常规血清生化、免疫学检测、血库及血清学相关检验。 | 1. 采集后垂直静置30分钟以上，待血自然凝固。
2. 静置后及时离心分离血清，避免溶血。 | 橘红色 | 促凝剂 | 急诊血清生化，能加速凝血过程。 | 1. 采集后需立即颠倒混匀5-8次，激活促凝剂。
2. 静置5分钟血液即可凝固，便可离心检测。 | 黄色/金黄色 | 分离胶、促凝剂 | 常规血清生化、免疫学、甲状腺功能、肿瘤标志物等。 | 1. 采集后需立即颠倒混匀5-8次，使血液与促凝剂充分接触。
2. 静置30分钟后离心。离心后，分离胶会形成屏障将血清与血细胞隔离，48小时内保持稳定。 | 浅蓝色 | 枸橼酸钠(1:9) | 凝血功能检测（如PT、APTT、TT、FIB）。 | 1. 必须准确采血至刻度线，以确保抗凝剂与血液的比例为精确的1:9，血量不准将严重影响结果。
2. 采集后立即轻轻颠倒混匀5-8次。 | 绿色 | 肝素钠/锂 | 急诊生化、血流变（血液粘度）、某些微量元素检测。 | 1. 采集后立即颠倒混匀5-8次。
2. 不适用于白细胞计数和分类，因为肝素会引起白细胞聚集。
3. 注意：若检测钠离子，不能使用肝素钠管。 | 浅绿色 | 肝素锂、分离胶 | 急诊血浆生化，特别是电解质检测的最佳选择。 | 采集后立即颠倒混匀5-8次，可快速分离血浆。 |
黑色 | 枸橼酸钠(1:4) | 红细胞沉降率（血沉，ESR）。 | 1. 必须准确采血至刻度线，以保持抗凝剂与血液精确的1:4比例。
2. 采集后立即轻轻颠倒混匀5-8次，防止凝固。 | 灰色 | 氟化钠、草酸钾 | 血糖、糖耐量、乳酸检测。 | 1. 氟化钠可抑制糖酵解，确保血糖浓度稳定。
2. 采集后需立即颠倒混匀5-8次。
3. 采血后应尽快送检。 |
通用要点与采血顺序通用处理：所有样本采集后，应在2小时内送检，时间越短，影响因素越少。送检时避免强光照射、剧烈摇晃和极端温度，以防溶血。 采血顺序：当需要采集多管血液时，必须遵循严格的顺序，以避免添加剂交叉污染。 新标准推荐顺序（适用于绝大多数情况）：血培养瓶 → 柠檬酸钠抗凝采血管（蓝帽、黑帽）→ 血清采血管（红帽、黄帽）→ 肝素抗凝采血管（绿帽）→ EDTA抗凝采血管（紫帽）→ 葡萄糖酵解抑制采血管（灰帽）。 个别没有离心条件的牧场等室外采血可用黄色帽的采血管，内含分离胶，静置2-4小时，自动分离血清和血细胞（注意管不能晃动）。再没有条件，可以红色帽采血管取血后静置2-4小时，让血清自动析出（注意管不能晃动）。到实验室再离心取血清。血涂片：EDTA抗凝采血管（紫帽） 病理HE染色标本：不可冻存，立即放入福尔马林管中固定标本。 冰冻切片：组织离体后应立刻处理，避免干燥，修块至厚约1-2mm，大小不超过0.5cm，用滤纸吸干表面液体，以减少冰晶形成导致的形态损伤，若不能立即操作，需将新鲜组织置于超低温冰箱（-80℃）或液氮中暂存。 骨组织HE染色：固定-将新鲜骨组织立即放入10%中性福尔马林溶液（或4%多聚甲醛）中固定24小时以上，防止组织自溶。必须使用中性或弱碱性的固定液，以防止脱钙步骤的酸液诱发“酸溶血”效应，导致细胞核染色模糊。脱钙：这是关键步骤。将固定后的组织放入脱钙液中，直至其完全软化。脱钙液的种类和脱钙时间的选择，取决于检测目的和组织类型具体咨询病理老师。 以上信息旨在提供临床参考，具体操作请务必遵循所在医医学检验的最新标准操作流程。
|
